細胞培養的條件一般離不開這5個(gè):合适的細胞培養基、優質血清、無菌無毒細胞培養環境、恒定的細胞生長(zhǎng)溫度、合适的氣體環境
絕大部分細胞消化的時候是隻要用胰酶潤洗一遍即可。吸去胰酶後,殘留的那些無法計算體積的附著(zhe)在細胞表面的微量胰酶在37℃一般不到2min足夠消化細胞(絕大部分1min不到)。對於(yú)這些細胞原則上不要用胰酶孵育細胞,連續這樣傳代,對細胞傷害很大。
不是細胞全部成間隔分布很離散的單個圓形才算消化好瞭(le),一般你肉眼觀察貼壁細胞層,隻要能移動瞭(le),多半呈沙壯移動,其實已經可以瞭(le),很多人喜歡把細胞消化或者吹打成*分離細胞,這是沒有必要的。一般能移動瞭(le),說明細胞與培養基質材料的附著(zhe)已經消失瞭(le),細胞之間的附著(zhe)也已經消失瞭(le),細胞已經獨立分布瞭(le)(雖然沒有呈現很廣的離散分布)。這個時候應該停止消化,不要等到看到鏡下所有細胞都分離得非常好,間隙很大,才停止。
細胞就是*成單個細胞懸液,之後在貼壁的過程中仍然會聚集,這個是貼壁培養的細胞,尤其是腫瘤細胞的一個特性,無論死活的細胞都是如此,你可以嘗(cháng)試,準備(bèi)100%的單個細胞懸液,貼壁後觀察細胞,仍然是幾個幾個細胞聚集在一起。一些懸浮培養細胞也是如此,容易聚集,不要去嘗(cháng)試過幾個小時就拿出來吹打成單細胞懸液(不要笑,這個是初養懸浮細胞的人常犯的錯誤,以爲懸浮培養就是一個一個分開)。細胞隻要能從基質上脫離下來,這個時候即使是成片的(比如Calu-3細胞),吹打不超過20次後(一般10次即可),成小規模聚集(10個細胞左右),是正常的,不要試圖再去延長消化時間,或者象有的同學那樣吹打1h,等待單細胞懸液出現。
比較難消化的細胞(潤洗方法5min還不能消化),就以coloncancer爲例,比如HCT15,LS411和KM12,這樣的細胞一般需要用少量胰酶孵育,但也不需要很多,一般100mmdish,一次多加入500ul,就足夠瞭(le),一般我加300ul。即使這樣難消化的細胞,一般不超過5min,即可見細胞成片移動(dòng),就應該停止消化。一些正常細胞也會有難消化的時候,比如tsDC細胞,但也隻要用少量胰酶孵育,3min左右即可看到成片沙狀移動(dòng)。